使用尼康 TS2 显微镜观察动物细胞细胞器分布，一般有以下步骤：

尼康 TS2 显微镜样品制备

细胞培养：选取合适的动物细胞系，如 HeLa 细胞，在含有适宜营养成分的培养基中，于培养箱内培养，使细胞处于良好的生长状态。

细胞固定：当细胞生长至对数生长期时，用胰蛋白酶将细胞从培养瓶壁消化下来，制成细胞悬液。然后将细胞悬液滴加在载玻片上，待细胞贴附后，使用 4% 多聚甲醛溶液对细胞进行固定，一般固定 15 - 30 分钟，以保持细胞的形态和细胞器的结构。

细胞通透：用含有 0.1% Triton X - 100 的 PBS 溶液处理细胞，作用 5 - 10 分钟，使细胞膜具有通透性，便于抗体等试剂进入细胞与细胞器结合。

封闭：将载玻片放入含有 5% 牛血清白蛋白（BSA）的 PBS 溶液中，室温封闭 30 分钟，以减少非特异性结合。

尼康 TS2 显微镜抗体孵育：

加入针对特定细胞器的一抗，如抗线粒体的抗体、抗内质网的抗体等，4℃孵育过夜。一抗能够特异性地结合到相应的细胞器上。

用 PBS 溶液洗涤载玻片 3 次，每次 5 分钟，以去除未结合的一抗。

加入与一抗对应的荧光标记二抗，室温孵育 1 - 2 小时。二抗可以与一抗结合，从而使细胞器被荧光标记，便于在显微镜下观察。

再次用 PBS 溶液洗涤载玻片 3 次，每次 5 分钟，去除未结合的二抗。

细胞核染色：用含有 DAPI（4',6 - 二脒基 - 2 - 苯基吲哚）的染液对细胞进行染色，DAPI 可以特异性地结合到细胞核的 DNA 上，使其发出蓝色荧光，从而标记出细胞核的位置。染色时间一般为 5 - 10 分钟，然后用 PBS 溶液洗涤 1 - 2 次。

封片：在载玻片上滴加适量的抗荧光淬灭封片剂，然后盖上盖玻片，尽量避免产生气泡。封片剂可以减少荧光的淬灭，使观察效果更好。

尼康 TS2 显微镜显微镜设置

光源选择：尼康 TS2 显微镜通常配备有汞灯或 LED 光源。对于荧光观察，根据所使用的荧光染料的激发波长，选择合适的激发光滤光片组，并打开相应的光源。例如，观察 DAPI 标记的细胞核，需要使用紫外光激发；观察常见的绿色荧光蛋白（GFP）标记的细胞器，一般使用蓝光激发。

物镜选择：根据观察的需求和细胞的大小，选择合适的物镜。低倍物镜（如 10×、20×）可以用于观察细胞的整体形态和分布，高倍物镜（如 40×、63×、100×）则可以更清晰地观察细胞器的细节。对于观察细胞器分布，通常需要使用高倍物镜，以获得足够的分辨率。

光路调整：

开启光源后，通过调节聚光镜的高度和孔径光阑的大小，使光线均匀地照射在样品上。对于高倍物镜，可能需要适当减小孔径光阑，以提高图像的对比度。

使用荧光观察时，需要通过调节荧光光路中的反射镜和透镜，使激发光准确地照射在样品上，并使发射的荧光能够有效地被收集和成像。

尼康 TS2 显微镜观察与分析

找到细胞：将制备好的样品放在显微镜载物台上，使用低倍物镜找到细胞群体。通过调节粗准焦螺旋和细准焦螺旋，使细胞图像清晰聚焦。可以移动载物台，选择细胞分布均匀、形态良好的区域进行观察。

切换到高倍物镜：在低倍物镜下确定好观察区域后，小心地切换到高倍物镜。由于高倍物镜的工作距离较短，切换时要注意避免物镜碰到样品。切换后，再次微调细准焦螺旋，使细胞器的图像达到最佳清晰度。

观察细胞器分布：根据不同荧光标记的颜色和位置，观察各种细胞器在细胞内的分布情况。例如，线粒体通常呈现为红色或绿色的点状或线状结构，分布在细胞质中；内质网可能呈现为网络状结构，分布在细胞核周围和细胞质中；高尔基体则通常表现为靠近细胞核的一些囊泡状或扁平囊状结构。

图像采集与分析：使用显微镜自带的成像系统，如 CCD 或 CMOS 相机，采集细胞和细胞器的图像。可以对采集到的图像进行分析，例如使用图像分析软件测量细胞器的大小、数量、分布密度等参数，还可以通过对不同荧光通道的图像进行叠加和分析，研究不同细胞器之间的相互关系和空间分布规律。